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南城飯?zhí)盟筒?推薦出口水果中多菌靈殘留量檢驗(yàn)方法

發(fā)布時(shí)間：2017-01-29 發(fā)布者：首宏水果配送中心所屬類別：水果知識(shí)

1 主題內(nèi)容與適用范圍

    本規(guī)范規(guī)則了出口水果中多菌靈殘留量檢驗(yàn)的抽樣、制樣和液相色譜測(cè)定辦法。
    本規(guī)范適用于出口柑桔中多菌靈殘留量的檢驗(yàn)。

    2 抽樣和制樣

    2.1 檢驗(yàn)批
    以不超過(guò)1 500件為一檢驗(yàn)批。
    同一檢驗(yàn)批的商品應(yīng)具有相同的特征,如包裝、標(biāo)志、產(chǎn)地、規(guī)格和等級(jí)等。
    2.2 抽樣數(shù)量
    批量,件      最低抽樣數(shù),件
    1～25             1
    26～100           5
    101～250          10
    251～1 500        15
    2.3 抽樣辦法
    按2.2規(guī)則的抽樣件數(shù)隨機(jī)抽取,逐件開(kāi)啟。每件至少取500g作為原始樣品,原始樣品總量不得少于2kg。加封后,標(biāo)明標(biāo)志,及時(shí)送實(shí)驗(yàn)室。
    2.4 試樣制備
    將所取原始樣品縮分出1kg,取可食局部,經(jīng)組織搗碎機(jī)搗碎,均分成兩份,裝入干凈容器內(nèi),作為試樣。密封,并標(biāo)明標(biāo)志。
    2.5 試樣保管
    將試樣于－18℃以下冷凍保管。
    注：在抽樣和制樣的操作過(guò)程中,必需避免樣品遭到污染或發(fā)作殘留物含量的變化。

    3 測(cè)定辦法

    3.1 辦法提要
    試樣用鹽酸溶液加熱回流,停止提取。提取液經(jīng)過(guò)濾后調(diào)至堿性,再用二氯甲烷提取。
    提取液經(jīng)濃縮,c18預(yù)處理小柱凈化,甲醇洗脫。洗脫液濃縮后用液相色譜儀－紫外檢測(cè)器測(cè)定,外標(biāo)法定量。
    3.2 試劑和資料
    所用試劑除注明外,均為剖析純,水為蒸餾水。
    3.2.1 正己烷：優(yōu)級(jí)純。
    3.2.2 二氯甲烷。
    3.2.3 甲醇：色譜純。
    3.2.4 甲醇溶液：20%(v/v)水溶液。
    3.2.5 鹽酸溶液：2mol/l。
    3.2.6 氫氧化鈉溶液：10mol/l,2mol/l。
    3.2.7 碳酸氫鈉溶液：用水溶解5g碳酸氫鈉并稀釋至100ml。
    3.2.8 多菌靈規(guī)范品：純度≥96%。
    3.2.9 多菌靈規(guī)范溶液：精確稱取適量的多菌靈規(guī)范品,先用少量的鹽酸溶液(3.2.5)微熱溶解,再用該鹽酸溶液定容,配成濃度為1.00mg/ml的規(guī)范儲(chǔ)藏溶液。依據(jù)需求再配成恰當(dāng)濃度的規(guī)范工作溶液。
    3.3 儀器和設(shè)備
    3.3.1 液相色譜儀并配有紫外檢測(cè)器。
    3.3.2 離心管：具塞,5ml,15ml,50ml。
    3.3.3 離心機(jī)：轉(zhuǎn)速6 000r/min。
    3.3.4 快速混勻器。
    3.3.5 高速組織搗碎機(jī)。
    3.3.6 多功能微量化學(xué)樣品處理儀（或相當(dāng)?shù)难b置）。
    3.3.7 微量注射器：25μl、100μl。
    3.3.8 玻璃抽濾器。
    3.3.9 砂芯漏斗：2號(hào)或3號(hào)。
    3.3.10 c18預(yù)處理小柱：先用3ml甲醇,再用同體積水分別淋洗。
    3.3.11 注射器：5ml。
    3.4 測(cè)定步驟
    3.4.1 提取、凈化
    稱取試樣約5g(精確到0.1g)于50ml離心管(3.3.2)內(nèi),加10ml鹽酸溶液(3.2.5),裝上回流冷凝管后,加熱至沸騰,回流30min。移出,冷卻至室溫。將離心管內(nèi)的樣液用砂芯漏斗抽濾,再用10ml鹽酸溶液(3.2.5)分?jǐn)?shù)次洗滌殘?jiān)�。合并濾液,在容量瓶中用鹽酸溶液(3.2.5)定容至25ml。
    精確吸取2.5ml上述濾液,同時(shí)吸取與樣液中多菌靈濃度相近的規(guī)范工作溶液2.5ml,分別置于15ml離心管中,加4ml二氯甲烷,在快速混勻器上混勻2min,離心(4 000r/min)3min。用尖嘴吸管吸出下層二氯甲烷,棄去。在水相中加入適量氫氧化鈉溶液(10mol/l),使試液接近堿性,然后小心滴加氫氧化鈉溶液(2mol/l),使試液的ph為10～11。再滴加碳酸氫鈉溶液,使試液的ph調(diào)至9.5～10。用3×4 ml二氯甲烷在快速混勻器中提取2min,離心(4 000r/min)3min,用尖嘴吸管將二氯甲烷轉(zhuǎn)入另一離心管中。合并三次二氯甲烷提取液,濃縮至1ml。
    將上述濃縮的提取液通過(guò)注射器轉(zhuǎn)入c18預(yù)處理小柱(3.3.10)。用3ml 甲醇溶液(3.2.4)洗滌離心管并過(guò)c18預(yù)處理小柱,棄去流出液。繼用3ml正己烷洗滌離心管并過(guò)c18預(yù)處理小柱,棄去流出液。用2×2.5ml甲醇(3.2.3)洗滌離心管并過(guò)c18預(yù)處理小柱,收集二次洗脫液并濃縮至1ml以下。用甲醇(3.2.3)定容至1ml,供液相色譜測(cè)定。
    3.4.2 測(cè)定
    3.4.2.1 色譜條件
    a. 色譜柱：μbondapak c18,300mm×29mm(id)；
    b. 流動(dòng)相：甲醇－水(4＋6)；
    c. 流速：0.8ml/min；
    d. 檢測(cè)器：紫外檢測(cè)器,測(cè)定波長(zhǎng)286nm；
    e. 色譜柱溫度：室溫。
    3.4.2.2 色譜測(cè)定
    依據(jù)樣液中多菌靈含量情況,選定與樣液峰高相近的規(guī)范工作溶液。規(guī)范工作溶液和樣液中多菌靈響應(yīng)值均在儀器檢測(cè)線性范圍內(nèi)。對(duì)規(guī)范工作溶液和樣液等體積參插進(jìn)樣測(cè)定。在上述色譜條件下,多菌靈保留時(shí)間約為7min。
    3.4.3 空白試驗(yàn)
    除不加試樣外,按上述測(cè)定步驟停止。
    3.5 結(jié)果計(jì)算和表述
    用色譜數(shù)據(jù)處理機(jī)或按下式計(jì)算試樣中多菌靈殘留含量：
               h·cs
            x=───-
               hs·c
    式中：x—試樣中多菌靈殘留量,mg/kg;
          h—樣液中多菌靈的峰高,mm；
          hs—規(guī)范工作溶液中多菌靈的峰高,mm；
          cs—規(guī)范工作溶液中多菌靈的濃度,μg/ml；
          c—最終樣液所代表的試樣濃度,g/ml。
    注：計(jì)算結(jié)果需扣除空白值。

    4 測(cè)定低限、回收率

    4.1 測(cè)定低限
    本辦法的測(cè)定低限為0.7mg/kg。
    4.2 回收率
    回收率的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)：多菌靈添加濃度在0.7～12.0mg/kg范圍內(nèi),回收率為90.9%～102.2%。

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